1．電泳中常出現(xiàn)的一些現(xiàn)象：
●︶ 條帶呈笑臉狀
原因：凝膠不均勻冷卻，中間冷卻不好; 電泳系統(tǒng)溫度偏高。
●︵ 條帶呈皺眉狀
原因：可能是由于裝置不合適，特別可能是凝膠和玻璃擋板底部有氣泡，或者兩邊聚合不完全。
●拖尾
原因：樣品溶解不好。
●紋理（縱向條紋）
原因：樣品中含有不溶性顆粒。
●條帶偏斜
原因：電極不平衡或者加樣位置偏斜。
●條帶兩邊擴(kuò)散
原因：加樣量過多。
2．Western blot 結(jié)果中背景較高
可能的原因及建議：
●膜封閉不夠
延長(zhǎng)封閉的時(shí)間；選擇更加適合的封閉液。
●一抗稀釋度不適宜
對(duì)抗體進(jìn)行滴度測(cè)試，選擇最適宜的抗體稀釋度。
●一抗孵育的溫度偏高
建議4℃結(jié)合過夜。
●選擇的膜容易產(chǎn)生高背景
一般硝酸纖維素膜的背景會(huì)比PVDF 膜低。
●膜在實(shí)驗(yàn)過程中干過
實(shí)驗(yàn)過程中要注意保持膜的濕潤(rùn)。
●檢測(cè)時(shí)曝光時(shí)間過長(zhǎng)
減少曝光時(shí)間。
3．Western blot 結(jié)果中雜帶較多
可能的原因及建議：
●目的蛋白有多個(gè)修飾位點(diǎn)（磷酸化位點(diǎn)、糖基化位點(diǎn)、乙�；�位點(diǎn)等），本身可以呈現(xiàn)多條帶。
查閱文獻(xiàn)或進(jìn)行生物信息學(xué)分析，獲得蛋白序列的修飾位點(diǎn)信息，通過去修飾確定蛋白實(shí)際大小。
●目的蛋白有其它剪切本
查閱文獻(xiàn)或生物信息學(xué)分析可能性。
●樣本處理過程中目的蛋白發(fā)生降解
加入蛋白酶抑制劑；樣本處理時(shí)在冰上操作。
●上樣量過高，太敏感
適當(dāng)減少上樣量。
●一抗特異性不高
重新選擇或制備高特異性的抗體。
●一抗不純
純化抗體
●一抗或者二抗?jié)舛绕��?br />降低抗體濃度。
4 . Western blot 結(jié)果中無信號(hào)或顯示信號(hào)弱
可能的原因及建議：
●檢測(cè)樣本不表達(dá)目的蛋白
選擇表達(dá)量高的細(xì)胞作為陽(yáng)性對(duì)照，用于確定檢測(cè)樣本是否為陰性。
●檢測(cè)樣本低表達(dá)目的蛋白
提高上樣量，裂解液中注意加入蛋白酶抑制劑。
●轉(zhuǎn)移不完全或過轉(zhuǎn)移
可以用麗春紅染膜并結(jié)合染膠（考馬斯亮藍(lán)）后確定條帶是否轉(zhuǎn)至膜上或轉(zhuǎn)移過頭；適當(dāng)調(diào)整轉(zhuǎn)膜的時(shí)間
和電流。
●抗體不能識(shí)別測(cè)試種屬的相關(guān)蛋白
購(gòu)買抗體前應(yīng)當(dāng)認(rèn)真閱讀抗體說明書，確定其是否能夠交叉識(shí)別測(cè)試種屬的對(duì)應(yīng)蛋白。
●一抗孵育時(shí)間不足
建議4℃結(jié)合過夜。
●二抗與一抗不匹配
選擇針對(duì)一抗來源的種屬的抗體。
●洗膜過度
洗膜時(shí)間不宜過長(zhǎng)，加入的去垢劑不宜過強(qiáng)或過多，建議使用0.1%的弱去垢劑Tween-20。
5.其它現(xiàn)象：
●膜上多處出現(xiàn)黑點(diǎn)或黑斑
原因：抗體與封閉試劑發(fā)生非特異性的結(jié)合。
●反白（條帶顯白色）
原因：目的蛋白含量太高或者一抗?jié)舛绕�高�?br />●蛋白分子量偏低或偏高
原因：膠濃度不適合，高分子量要用低濃度膠；小分子蛋白要用高濃度膠。
6．安全問題：
操作有毒試劑時(shí)，帶手套和口罩，且操作揮發(fā)性試劑應(yīng)在通風(fēng)櫥中進(jìn)行。